lunes, 22 de junio de 2009

DESARROLLOS DE LA PRACTICAS(;


PRACTICA #1 y 2 "Medio de Cultivo"

-Conectamos la Linea de Gas LP

-Pusimos una hoja blanca sobre la mesa

-Conectamos los mecheros al Gas LP

-Hisimos la regla de 3

39x19%100=0.68x7=4.7

-LLenamos el matraz de agua Destilada que son 100ml.

-Baseamos el 1/2 de cultivo en el matraz  con agua destilada .

-Prendimos el Gas LP(lumbre) y lo batimos 

-Lo pusimos a herbir y lo dejamos 1 min.hirbiendo

-Lo rebolbemos con un legero muñequeo

-Lo esterilizamos

-Lo tapamos-Pusimos lo datos en el Matraz con el 1/2 de cultivo

-Lo pusimos en el autoclave por 30 min.

-Lo sacamos 

-Baseamos un medio de cultivo ala caja petric

-Dejamos que se endurezca entre los mecheros

-Les ponemos los datos

-Acomodamos Materiales de la mesa 

-Y Los entregamos.


PRACTICA #3 "Siembra por Estrias"

Se entregaron materiales nesesarios para la mesa , nos entregaron los medios de cultivo nos dio explicacion a cada procedimiento nesesario para la practica luego se tomo la muestra de sangre , Orina, Se tomo una muestra dental y tambien del pie, metimos la Sangre al tubo del tapon rojo , luego cada una de la muestras se puso en las cajas petric donde estan los medios de cultivo anteriormente se conectaron los mecheros y se conecto la linea de Gas LP, se dejaron los medios de cultivo entre los mecheros se pueso el nombre de la siembras.

*Tapiz

*S-D

*Estriada

*Sigsne

*Kass

*Exagonal


PRACTICA#4 "Observasion Microscopica"

1-Agar con Eosina y Azul de Metileno.

Tipo:Orina Centrifugada_Kass.

Hubo un Cambio en las 24 Hrs.no se observo ningun cambio en este tipo de siembrapero esperamos un mejor cambio en 48 Hrs


2-Agar de Salmonella y Shingella

Tipo:Sangre_Tapiz

En la caja petric observo miy poco cambio en el medio de cultivo, alcanzo a notar grumitos de sangre, pero no hay mucho crecimiento.


3-Agar Verde Brillante

Tipo:Orina Directa_S-D

En este Cultivo alcanzo a mirar un puntito de color guinda , pero tendremos que esperar 48 Hrs para verlo bien , pero no se mira casi nada.


4-Agar de Hierro de Kliger

Tipo: De cualquier Mezcla(Agua de Sabor)_Exagonal

Se nota un amancha de color Amarilla opaca con unos puntitos guiados en ilera de color rojo, estoe n 24 Hrs, Esperamos ver mas cambios en 48 Hrs 


5-Agar Mc Conkey

Tipo: Interdenta l_ Sigsne.

En la caja petric se alcanza a mirar un color como color rosa combinado con ginda  claro y se mira muchas bolitas rojas muy claras , redondas en todas la caja.


6-Agar con dextroxa Saubaurau 

Tipo:Pies_ Estriado.

En la caja 1/2 de cultivo es color transparente y en su interior se ven unas manchitas circulares pequeñas de color cremita claro.


PRACTICA#5 "Frotis"

Colocamos el papel Blanco, conectamos la Linea de Gas LP y prendimos los mecheros , luego abrimos las cajas petric c on el medio de cultivo , nos dieron un porta objetos ,y le colocamos a una Asa de platina con agua y sacamos le ponemos un poco de medio de cultivo y de la siembra lo revolbemos hasta que quede bien rebuelto , luegooo con los mecheros lo quemamos y queda el cultivo en el porta objetos.


PRACTICA# 6 Y 7 "FROTIS TINCION"

Conete el microscopio  y la laminilla ehi, luego lo enfocamos  y pude obserbar unas cositas redondas y gusanitos rosas fuertes y claros tambien.


PRACTICA#8 y 9 "Aglutinacion en suero Sanguinieo en Sangre"

Sacamos sangre colocamos 2.5 ml en el tubo de ensaye con tapon Rojo y 2.5 al tubo d eensaye con tapon morado.

Despues esperamos a que se cuhagulara , lo metimos ala centrifuga y sacamos el liquido plasmico le colocamos una gota de liqiuido  ala laminilla de cristal , despues le colocamos una gota de liquidos azules los revolbimos , los colocamos en el microscopio lo obserbamos y lo sacamos.


Practicas..


Operar Equipo de Laboratorio y Materiales de Laboratorio
Practica #1 Medios de Cultivo
1._ Objetivo: debe ser realizado por el alumno
2._ Introducción
3._ Índice
4._ Indicaciones para desarrollas un medio de cultivo

1.-Se debe solicitar en el laboratorio de análisis clínicos un formato par anotar los materiales que se utilizaran en el laboratorio del medio de cultivo. 
2.-Debe de tener su equipo de bioseguridad completo
3.-Vestir la mesa de laboratorio con papel blanco.
4.-una persona del grupo o dos debe de verificar que este activada del gas LP. Para ello se deben de conectar a los mecheros y abrir las válvulas que se encuentran por de bajo de las mesas de trabajo
5.- Una ves verificado el gas se habilita el equipo de esterilización “autoclave” al cual se le debe introducir agua destilada para llevar acabo la esterilización por calor húmedo

NOTA: ver técnica de esterilización en autoclave

Desarrollo de la práctica
Se debe  pensar en la balanza granataria el contenido en gramos dependiendo de las cajas petri solicitadas siguiendo las indicaciones que contiene el medio de cultivo.
Se ocupa rehidratar el contenido del polvo para las 5.7 cajas y este se mezclar en el contenido de agua destilada que se requiera par las cajas solicitadas.
El polvo se mezcla junto con el agua en el vaso de precipitado que anteriormente fue pesado en el vidrio de reloj para mezclar se utiliza una varilla de cristal como agitador cuidando que no quede suficiente grumos en las paredes del vaso de precipitado.
Para facilitar esta actividad puede utilizar  el matraz e elenmeyer de forma directa y al terminar la mezcla se deja en reposo como la marca las indicaciones del bote del medio de cultivo a trabajar.
Se debe de llevas los tiempos de trabajo y acomodarlos en forma como bitácora de actividades la cual inicia con este medio de cultivo y termina con las observaciones microscópicas del mismo en la practica 8.
Una ves reposado el medio de cultivo se expone al fuego del mechero con un ligero muñequeo hasta dejar que se presente la ebullición, una ves presentada se toma el tiempo de un minuto de ebullición cuidando que este producto al hervir no se derramen ya que puede ocasionar quemadura hasta de segundo grado.

NOTA:
Si el medio de cultivo se tira por negligencia tendrán cada uno de los integrantes 2 puntos menos en su calificación.

Una ves que ya dio la ebullición y el tiempo adecuado del minuto se deja enfriar y reposar para poderlo tapar (tamponear) con torundas de algodón muy cuidadosamente sin que estas se baya al interior del vaso se ponen se pone poquito masquen tape para asegurarse que este bien cerrado se etiqueta con el numero de la mesa el nombre del medio de cultivo y la fecha ya terminado este proceso se introduce al autoclave para iniciar la esterilización del medio.


* Técnicas de esterificación 
Ya esterilizado el medio de cultivo se retira del autoclave se deja enfriar poniéndolo en el campo de esterilización de la mesa el cual esta a base de los mecheros y en el centro de las cosas (siempre), se deja enfriar u se prepara los materiales para el vaseado es vaso de precipitado de 50 ml y cajas de petri que se vallan utilizar para realizar el vaseado en las cajas petri se toma el vaso de precipitado se esteriliza previamente la boquilla del  mismo el mechero se pasa cuidadosamente y una ves que este listo se le vierte el liquido del medio de cultivo que se depositara en cada caja petri.
Ya estando las cajas petri trabasadas (llenas) se dejan semi tapadas y no en si totalidad para evitar que se forme vapor de agua en si interior
Se taparan las cajas petri una ves que el alumno verifique que el piso del medio de cultivo sea solidificado ya cerradas se estivan (enciman) se etiquetan con los datos del medio de cultivo, nombre, mesa, fecha, de elaboración y se entregaran al encargado del laboratorio en forma invertida para su refrigeración.
Si el producto elaborado se contamina en un promedio de 24, 48  72 horas quier decir que no se tomaron las medidas adecuadas de esterilización por lo que se deberá realizar un nuevo medio lógico aplicando la sanción requerida al laboratorio.




Practica # 2
Técnicas de esterilización 
Esterilización por húmedo (autoclave)
El alumno deberá realizar el proceso de esterilización del producto que ocupara la práctica de siembras para ello requiere tener los conocimientos de la técnica de esterilización en autoclave ya anteriormente dada.
MATERIALES 
Autoclave
Agua destilada
Corriente eléctrica
Guantes para alta temperatura
DESARROLLO
(Aplicar técnica de esterilización)
NOTA:
BITACORA:
El alumno debe realizar su propia bitácora de actividades la cual registrara  nombre de las practicas, tiempo utilizado, fecha de trabajo, observaciones, en esta bitácora debe registrar al final un recuadro que indique el espacio para firmar de aceptado o rechazado; Esta debe ser cuadriculada utilizando la creatividad del alumno.










Practica # 3
Siembras en medio de cultivo
El alumno debe realizar una siembra en medios de cultivo de forma estriada, variada y aplicando el nombre de cada una de ellas de las que anteriormente se dieron en el salón de clases.
Materiales
5 a 7  cajas petri de medio de cultivo anteriormente habilitadas
 Asa bacteriológica
Baso de precipitado con 25 ml de agua destilada 
2 mecheros de unce
Papel para mesa de laboratorio tubo tónico 
Masquen tape
Torundas de algodón con secas (3 a 4)
2 torundas de algodón con alcohol


Muestra para siembras
a)saliva
b)muestra interdental 
c)orina
d)agua preparada (jamaica, piña)
e)verduras de las que preparan para ser tortas
f)muestre de sangre


Técnicas de extracción  sanguínea
Se utilizan los siguientes materiales
Jeringa de 5 ml para extraer 2.5 ml 
torundas alcoholizadas
torniquete
Se realiza asepsia y antisepsia se plegue del brazo utilizando una torunda con alcohol.
los movimientos de limpieza son arriba hacia  abajo ( del brazo hacia el antebrazo) porque contaminamos el área. 
Unas ves esterilizadas  iniciamos la técnica de Beno función y para ello debemos manejar nuestra jeringa hipodérmica desechable.
Se verifica el aseguramiento de la aguja en la jeringa dándole un pequeño giro para que no se mueva y posteriormente jalando el embolo hacia atrás de las mismas y a su ves lo regresaremos hasta el fondo de la jeringa quedando esta lista para su uso.
Una ves lista nuestra jeringa y ya limpia la zona del pliegue se aplica el torniquete en la parte media del brazo para hacer presión y obtener una vasodilatación del conducto sanguíneo, en el cual se introducirán la aguja de la jeringa que es pinzo cortante y ya estando dentro del baso sanguíneo extraemos la sangre en cantidad dentro del baso sanguíneo extraemos la sangre en cantidad de volumen de 2.5 ml la que depositaremos en el tubo contaron  rojo sin anticoagulante.
No se retira el tapón del tubo se introduce la aguja e el teniendo un baseado rápido en su interior se retira la jeringa con todo y aguja y una ves tomado el tiempo  desde su extracción hasta el llenado del tubo registraremos  lo que llamaremos tiempo de coagulación, que es de 1 a 5 minutos hasta 8 minutos, el tiempo real esta entre uno y dos minutos.

Una vez coagulada la sangre en el tubo de ensaye, retiramos el tapón y centrifugados a 1500 revoluciones por minuto durante 5 minutos, teniendo como resultado la precipitación de paquete sanguíneo por centrifugación a lo que le daremos el nombre de separación de paquete y plasma.
Una vez separado el paquete en el tubo se ensaye vacío trasvasamos el plasma sanguíneo, el cual es color amarillo paja o pálido y que utilizaremos para realizar la siembre.
NOTA
Esta técnica se utilizara nuevamente en la prueba no. 8(aglutinación de pruebas febriles)


Se siembra el liquido plasmático en medio de cultivo utilizando la técnica bombadilla de cristal denominado siembre por dispersión.


Practica # 4 
Observación microscópica de colonias de microorganismos (bacterias) que se desarrollan en medio de cultivo.

El alumno debe realizar la observación macroscópica en el medio de cultivo sembrado.
Materiales
5 a 7 cajas petri con medio de cultivo
Herramientas de medición pie de rey o vernier
Registrar la observación, medición y conteo  de las colonias bacterianas, esto se debe a verificar en un campo de esterilización que se realiza con los dos mecheros, donde verificamos de olor, color, dimensión de la colonia.


Practica # 5
Elaboración de un frotis

Frotis:
Es un proceso científico que consiste en el extendido de una gota de sangre en la superficie de un porta objetos o de un cubreobjetos, con el fin de analizarla posteriormente.
Es mas adecuado emplear sangre que aun no ha estado en contacto co el anticoagulante, pues este podría alterar los resultados (algunos anticoagulantes tienen a deformar las células de la sangre)

-Se realiza en un porta objetos un frotis con materia de las cajas petri.
 Se toma con el asa bacteriológica previamente esterilizada en la flama del mechero una gota de agua del baso precipitado se introduce a la caja petri y se toma una pequeña muestra del producto que desarrollamos en ella.
Se deposita en el porta objetos dando móv. De izquierda a derecha sobre el
cristal para realizar el barrido el cual debe quedar delgado y fino, si queda grueso se vuelve a esterilizar, se toma una gota de agua, se vuelve a realizar el barrido en el cristal hasta que quede delgado y fino, hasta lograrlo.
Una ves realizada el frotis se va a fijar a fuego directo, pasando el portaobjetos por encima de la flama del mechero sin dejarlo fijamente  sobre ella.
Ya fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción. 
MATERIALES
portaobjetos limpio
asa bacteriológica
baso de precipitado con 50 ml con 25 ml de agua destilada 
2 mecheros de bunsen
GAS LP
Papel secante
Torundas de algodón secas
3 torundas con alcohol

                   
Practica # 6
Tensión de Gram.

Se realiza el proceso de tincion de Gram en el portaobjetos anteriormente provisto con material bacteriológico ya fijado al que le damos el nombre de frotis.
Se utiliza la tecnica de Gram la cual esta provista con dos tinturas un degradante y un yodo lugol, previamente utilizado os tiempos de marca la tecnica de Gram y para ello debemos investigar esta tecnica.
Al termino de esta tincion que dura 3 a 5 minutos debemos verificar que no se queme con las torundas que no sea altamente degradada para que podamos observarla, si todo esto sucediera debemos realizar nuevamente las actividades y a premira del tiempo solo nos da para dos nuevas acciones, si en al tercera oportunidad sigue el problema se realiza punto malo.
Sin  laminilla ya preparada y lista (practica # 7 observación macroscópica) se monta en la platina del microscopio se asegura con las pinzas de la platina y se observa a 100x donde encontramos bacterias en forma esférica y en forma de bastón y que ambas las podemos encontrar desde un hasta 4 piazas separado con puntas, en cadena en agrupaciones de hasta tercer plano.
Material de la práctica # 7
porta objetos debidamente teñido para observar material bacteriológico
aceite de inversión
microscopio compuesto o protónico
corriente eléctrica

Nota
Todos los trabajos de investigación se deben presentar en forma ordenada para firmarlos y subirlos al blog, iniciando a partir del lunes y por la tarde en la noche subirlas al blog.

Nota
No se aceptara  un solo trabajo si el borrador no lleva gráficos con colores

Investigar:
Las bacterias en forma de esfera llamadas cocos.
Las bacterias en forma de bastón llamadas bacilos
Las bacterias en forma de espiral llamadas espirilos o piroquetas



  Bacterias llamadas cocos:
Las bacterias pueden clasificarse de varios modos, como por ejemplo según su forma. Las bacterias que tienen forma esférica reciben el nombre de cocos. Los cocos que pueden causar infecciones en los humanos son los estafilococos, los estreptococos, los neumococos y los meningococos. 
-Infecciones estafilocócicas 
Las infecciones estafilocócicas son las causadas por los estafilococos, que son unas bacterias grampositivas muy frecuentes. 
Aunque normalmente están presentes en la nariz y en la piel del 20 al 30 por ciento de los adultos sanos (y menos frecuentemente en la boca, las glándulas mamarias y los aparatos genitourinario, intestinal y las vías respiratorias altas), los estafilococos no suelen ser perjudiciales. Sin embargo, la rotura de la piel u otra lesión pueden permitir que las bacterias atraviesen las defensas del organismo y causen una infección. 
Los individuos proclives a las infecciones estafilo-cócicas son los recién nacidos, las mujeres en período de lactancia, las personas con enfermedades crónicas (especialmente afecciones pulmonares, diabetes y cáncer), las que presentan afecciones cutáneas e incisiones quirúrgicas y aquellas cuyos sistemas inmunológicos están inhibidos por el uso de corticosteroides, radioterapia, fármacos inmunodepresores o medicaciones anticancerosas. 
-Síntomas 
Los estafilococos pueden infectar cualquier parte del organismo y los síntomas dependen de la localización de la infección. Ésta puede ser leve o llegar a poner en peligro la vida. Por lo general, las infecciones estafilocócicas producen cavidades llenas de pus, como los abscesos y los forúnculos (forúnculos y carbuncos). Los estafilococos pueden circular por la sangre y formar abscesos en los órganos internos, como los pulmones, así como infecciones de los huesos (osteomielitis) y del revestimiento interior del corazón y sus válvulas (endocarditis). 
Los estafilococos tienden a infectar la piel. Los abscesos estafilocócicos de la piel aparecen como abultamientos calientes llenos de pus, localizados bajo la superficie cutánea. Por lo general se rompen como lo haría un grano de gran tamaño y el pus se esparce sobre la piel, donde se puede producir más infección si no se limpia de inmediato. 
Bacterias llamadas bacilos 
Los bacilos son bacterias que tienen forma de bastón, cuando se observan al microscopio.
Los bacilos se suelen dividir en:
Bacilos Gram positivos: fijan el violeta de genciana (tinción de Gram) en la pared celular porque carecen de capa de lipopolisacárido. 
Bacilos Gram negativos: no fijan el violeta de genciana porque poseen la capa de lipopolisacárido (peptidoglicano). 
Aunque muchos bacilos son patógenos para el ser humano, algunos no hacen daño, pues son los encargados de producir algunos productos lácteos como el yogurt (lactobacilos).
Bacterias llamadas espirilos o piroquetas
Los espirilos son bacterias flageladas de forma helicoidal o de espiral. Se desplazan en medios viscosos avanzando en tornillo. Su diámetro es muy pequeño, lo que hace que puedan atravesar las mucosas; por ejemplo Treponema pallidum que produce la sífilis en el hombre. Son más sensibles a las condiciones ambientales que otras bacterias, por ello cuando son patógenas se transmiten por contacto directo (vía sexual) o mediante vectores, normalmente artrópodos hematófagos

viernes, 12 de junio de 2009

Act.#5


SALMONELLA THYPHI:

Es una bacteria anaeróbica facultativa, que puede en ocasiones 

sobrevivir en bajas condiciones de oxígeno. Pertenece al serotipo 9,12, en base a los 

epítopes de la tivelosa, el azúcar repetida en su antígeno O. El antígeno flagelar “d“ es el 

más preponderante, aunque algunas cepas de Indonesia poseen otro antígeno 

denominado “z”; lo que significa que expresan un flagelo muy diferente en secuencia de 

aminoácidos al encontrado en las cepas de otras regiones del mundo. Además de los 

antígenos O y H, tiene en su exterior una cápsula de polisacáridos denominada Vi (por 

antígeno de “virulencia”). 

Estos bacilos no producen esporas. La mayoría de las cepas son móviles debido 

a que poseen flagelos peritricos, que rodean a la célula. Interesantemente, existen cepas 

no móviles en Indonesia, en donde la incidencia de la fiebre tifoidea es más alta. 

Produce ácido a partir de glucosa, maltosa y sorbitol, sin la 

producción de gas; pero no fermenta la lactosa, sacarosa, la ramnosa y otros azúcares. 

Produce nitrito a partir de nitrato y también produce ácido sulfhídrico. Su temperatura 

óptima de crecimiento es de 37oC. 

TIFOIDEA:

La fiebre tifoidea o fiebre entérica es una enfermedad infecciosa producida por Salmonella typhi (bacilo de Eberth), o Salmonella paratyphi A, B o C. Su reservorio es el hombre, y el mecanismo de contagio es fecal-oral, a través de agua y de alimentos contaminados con deyecciones. Produce fenómenos inflamatorios y necróticos.que dura de 10 a 15 días, se aprecian trastornos del estado general, una fase de bacteriemia con fiebre que aumenta progresivamente hasta alcanzar 39-40 ºC, en cuyo momento se mantiene, cefaleaestuporroséola en el vientre, tumefacción de lamucosa nasallengua tostada, úlceras en el paladar y, a veces, hepatoesplenomegalia y diarrea.La enfermedad puede evolucionar a la curación en 2 semanas o prolongarse con localizaciones focales a partir de la quinta semana. Si no se somete a un tratamiento adecuado pueden presentarse complicaciones graves, como hemorragia y perforación intestinal, shock séptico. Debido a que la causa de la fiebre tifoidea es la falta de higiene, la adecuada manipulación de alimentos con las manos limpias, cocinar bien los alimentos.

TRANSMICIONES:

En aves y huevos:50%

Agua ,Hombres:30%

Animales de Granja:13%

Productos Lacteos:4%

Animales Domesticos: 3%


1-Alteracion ala vision

2-Dificultad para Tragar,sequedad en la Boca.

3-Incapacidad para respirar.

4-Retencion de Orina.

5-Perdida de Peso.

Act.#4

FROTIS:
El de sangre es un proceso científico que consiste en el extendido de una gota de sangre en la superficie de un portaobjetos o de un cubreobjetos, con el fin de analizarla posteriormente.
BITACORA:
 Cuaderno de notas diarias. Memoria de toda la investigación científica y fiel reflejo del esfuerzo y el empeño con que han cumplido cada una de las etapas del Proyecto.
ETAPA PREANALITICA:
Asegura que se efectue con calidad todo el procedimiento anterior ala prueba tanto por dentro como por fuera de Laboratorio.
ETAPA POSTANALITICA:
Errores en la entrega de resultados.
ETAPA ANALITICA:
Eventos adversos relasionados co el proceso analitico del examen:perdida de la muestra, error en procedimiento tecnico definido, analisis de muestra esquivocada y accidente personal con material con sangre y los fluidos coorporales contaminados.

TINCIONES (: Act.#3



¿Qué es una tinción directa y una indirecta?

En una tinción directa el colorante interacciona directamente con el sustrato. En una tinción indirecta se hace interaccionar en primer lugar a una sustancia química denominada "mordiente" con el sustrato la cual permite la posterior interacción del colorante. Usualmente los mordientes son sales, hidróxidos o alumbres de metales bivalentes o trivalentes.



TINCION AZUL DE METILENO

(LOEFFLER):

Para determinados fines pueden ser utilies las tinciones con azul de metileno de Loeffler

Se utilizan para observar morfologia, agrupacion, elementos celulares ,leucocitos, celulas epiteliales,etc

Tecnica:

1.-Cubrir el frotis con azul de metileno por 1 a 2 minutos.

2.-Lavar con agua corriente.

3.-Secar.

4.-Observar al microscopio.




La tinción de Gram o coloración Gram es un tipo de tinción diferencial empleado en microbiología para la visualización de bacterias, sobre todo en muestras clínicas. Debe su nombre al bacteriólogo danés Christian Gram, que desarrolló la técnica en 1884. Se utiliza tanto para poder referirse a la morfología celular bacteriana como para poder realizar una primera aproximación a la diferenciación bacteriana, considerándose Bacteria Gram positiva a las bacterias que se visualizan de color violeta y Bacteria Gram negativa a las que se visualizan de color rosa.



TINCION DE ZIEHL- NEELSEN:

Se denominan gérmenes alcohol ácido-resistentes a un grupo de organismos que, una vez teñidos con solución colorante-mordientes, tienen la propiedad de resistir la decoloración por ácidos minerales (ácido sulfúrico o nítrico) y alcohol.

Este carácter de ácido alcohol resistencia se debe a las sustancias serosas y lipídícas que contiene la membrana de envoltura de éstos gérmenes y que varía en las diferentes especies.

Entre los gérmenes ácido-resistentes se encuentran especies saprofitas y patógenas.



sábado, 9 de mayo de 2009

TIPOS DE SIEMBRA & MEDIO DE CULTIVO.

Escribe 5 tipos de siembra que se realiza en medio de cultivo:

1_: Siembra de hongos levaduriformes.

2_:  Siembra de hongos filamentosos. 

3_: Siembra de bacterias.

4_: Siembra de actinomicetos o bacterias filamentosas.

5_: Siembra de Serratia marcescens.

viernes, 8 de mayo de 2009

medio de cultivo

Solución que cuenta con los nutrientes necesarios para recuperarmultiplicaraislar e identificar los microorganismos (bajo condiciones favorables de temperatura y pH), así como efectuar pruebas de susceptibilidad. Generalmente se presentan desecados en forma de polvo fino o granular antes de ser preparados, al prepararse podemos encontrarlos en estado sólido, semisólido y líquido.


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